К обоснованию перечня опасных высокотоксичных химических веществ, требующих особого контроля за их оборотом, хранением, использованием и утилизацией. Часть III (дипиридиловые гербициды паракват и дикват)

  • Авторы: Н.Г. Проданчук, Г.М. Балан, А.П. Кравчук, П.Г. Жминько, И.Н. Максимчук, Н.П. Чермных
  • УДК: 631.348:661.162.2
  • DOI: 10.33273/2663-4570-2021-91-2-22-30
Скачать вложения:

Н.Г. Проданчук1, Г.М. Балан1, А.П. Кравчук1, П.Г. Жминько1, И.Н. Максимчук2, Н.П. Чермных1

1 Государственное предприятие «Научный центр превентивной токсикологии, пищевой и химической безопасности имени академика Л.И. Медведя Министерства здравоохранения Украины», г. Киев, Украина
2 Национальная полиция Украины, г. Киев, Украина.

РЕЗЮМЕ. Цель. Выделить группу высокотоксичных химических веществ, которые за последние десятилетия чаще всего используются в преднамеренных криминальных и суицидальных инцидентах, диверсионных и террористических актах, оборот, хранение, использование и утилизация которых требуют особенно жесткого контроля правоохранительных органов. В данной части статьи речь идет о дипиридиловых гербицидах – параквате и диквате.

Материалы и методы. Аналитический обзор научных публикаций выполнен с использованием реферативных баз данных научных библиотек PubMed, Medline и текстовых баз данных научных издательств Elsevier, PubMed, Central, BMJ group и других VIP-баз данных. Применены методы системного, сравнительного и контент-анализа.

Результаты и выводы. На сновании обзора литературы и исследований, проведенных в ГП «Научный центр превентивной токсикологии, пищевой и химической безопасности имени академика Л.И. Медведя МЗ Украины» показано, что высокотоксичные дипиридиловые гербициды паракват и дикват представляют угрозу жизни и здоровью человека. В последнее
время, в частности более четверти века, они стали настоящим оружием в руках преступников, криминальных элементов и террористов во всем мире. Нельзя замалчивать и суицидальные инциденты, которые также имеют место наряду с умышленными уголовными, террористическими и диверсионными актами. На основе анализа токсичности, клинических и морфологических проявлений этих химических веществ, учитывая различные пути поступления в организм, обоснована необходимость внесения их в Перечень особо опасных химических веществ, оборот которых, хранение, использование и утилизация требуют более жесткого контроля правоохранительных органов.

Ключевые слова: дипиридиловые гербициды, паракват, дикват, риск для здоровья, острые отравления.

 

REFERENCES

1. Jeyaratnam J. Acute pesticide poisoning: a major global health problem. World Health Stat Q. 1990;43:139–44.

2. Eddleston M, Phsiisps MR, Self poisoning with pesticides. BMG. 2004;328:42–4.

3. Gunnell D, Eddleston M, Phillips MR, et al. The global distribution of fatal pesticide self-poisoning: systematic review. BMC Public Health. 2007;7:357–9.

4. Dawson AH, Eddleston M, Senarathna L, et al. Acute human lethal toxicity of agricultural pesticides: a prospective cohort study. PloS Med. 2010;7:e1000357.

5. Yin Y, Guo X, Zhang SL, et al. Analysis of paraquat intoxication epidemic (2002–2011) within China. Biomed Environ Sci. 2013;26:509–12.

6. Patel V, Ramasundarahettige C, Vijayakumar L, et al. Suicide mortality in India: a nationally representative survey. Lancert. 2012;379:2343–51.

7. Chang SS, Lu TH, Eddleston M, et al. Factors associated with the decline in suicide by pesticide poisoning in Taiwan: a time trend analysis, 1987–2010. Clin Toxicol. 2012;50:471–80.

8. Gawarammana IB, Buckley NA. Medical management of paraquat ingestion. Br J Clin Pharmacol. 2011;72:745–57. DOI:10.1111/j.1365-2125.2011.04026.x.

9. Gawarammana IB, Buckley NA, Mohamed F, Nazer K, et al. High-dose immunosuppression to prevent death after paraquat self-poisoning – a randomized controlled trial. Clin Toxicol. 2017. DOI:org/10.1080/15563650.2017.1394465.

10. Senarathna l, Eddleston M, Wilks MF, et al. Prediction of outcome after paraquat poisoning by measurement of the plasma paraquat concentration. QJM. 2009;102:251–259.

11. Li LR, Sydenham E, Chaudhary B, et al. Glucocorticoid with cyclophosphamide for paraquat-induced lung fibrosis. Cochrane Database Syst Rev. 2014;8:CD008084.

12. Wu WP, Lai MN, Lin CN, et al. Addition of immunosuppressive treatment to hemoperfusion is associated with improved survival after paraquat poisoning: a nationwide study. PloS One. 2014;9:e87568.

13. Ghorbani A, Masoumi K, Forouzan A, et al. Effect of pulse therapy with glucocorticoids and cyclophosphamide in patients with paraquat poisoning. Hong Kong J Emerg Med. 2015;22:235–40.

14. Parakvat i dikvat. Gigiyenicheskiye kriterii sostoyaniya okruzhayushchey sredy. Sovmestnoye izdaniye Programmy OON po okruzhayushchey srede. Mezhdunarodnoy organizatsii truda i VOZ. Zheneva; 1989. 158 s.

15. Makovskiy VN. Toksikologo-gigiyenicheskoye issledovaniye dipiridilovykh gerbitsidov (dikvata i parakvata) [dissertatsiya] Kiyev; 1972.

16. Hutchinson G, Daisley H, Simeon D, Simmonds V, Shetty M, Lynn D. High rates of paraquat-induced suicide in southern Trinidad. Suicide Life Threat Behav. 1999;29:186–91.

17. Bourke T. Suicide in Samoa. Pac Health Dialog. 2001;8:213–9.

18. Dargan P, Shiew C, Gawarammana I, Jones A. Paraquat poisoning: caution in interpreting prognosis based on plasma paraquat concentration. Clin Toxicol. 2006;44:762.

19. Casey P, Vale JA. Deaths from pesticide poisoning in England and Wales: 1945-1989. Hum Exp Toxicol. 1994;13:95–101.

20. Bronstein AC, Spyker DA, Cantilena LR Jr, Green JL, Rumack BH, Giffin SL. 2008 annual report of the American Association of Poison Control Centers National Poison Data System (NPDS): 26th annual report. Clin Toxicol. (Phila) 2009;47:911–1084.

21. Wilks MF, Tomenson JA, Fernando R, Ariyananda PL, Berry DJ, Buckley NA, et al. Formulation changes and time trends in outcome following paraquat ingestion in Sri Lanka. Clin Toxicol. (Phila) 2011;49:21–8.

22. Wanhalder R, Coraldyn J, De Reuck F. Diquat intoxication. Am J Med 1981;70:1267–71.

23. McCarthy LG, Speth CP. Diquat intoxication. Ann Emerg Med 1983;12:394–6.

24. Balan GM. Prodanchuk NG. Bubalo NN. Babich VA. Sostoyaniye i perspektivy antidotnoy terapii ostrykh otravleniy pestitsidami. Suchasnі problemi toksikologії. kharchovoї ta khіmіchnoї bezpeki. 2015;1–2:67–76.

25. Elenga N, Merlin C, Le Guern R, Kom-Tchamen R, et al. Clinical features and prognosis of paraquat poisoning in French Guiana. Med. 2018;97:15(e9621).

26. Yang W, Tiffany-Castiglioni E. The bipyridyl herbicide paraquat induces proteasome dysfunction in human neuroblastoma SH-SY5Y cells. J Toxicol. Environ Health A. 2007;70:1849–57.

27. Castello PR, Drechsel DA, Patel M. Mitochondria are a major source of paraquat-induced reactive oxygen species production in the brain. J Biol Chem. 2007;282:14186–93.

28. Bonneh-Barkay D, Reaney SH, Langston WJ, Di Monte DA. Redox cycling of the herbicide paraquat in microglial cultures. Brain Res Mol Brain Res 2005; 134:52–6.

29. Adam A, Smith LL, Cohen GM. An assessment of the role of redox cycling in mediating the toxicity of paraquat and nitrofurantoin. Environ Health Perspect. 1990;85:113–7.

30. Zhao F, Wang W, Wang C, et al. Mfn2 protects dopaminergic neurons exposed to paraquat both in vitro and in vivo. Biochim. et biophys. acta. Mol. Basis Disease. 2017;6:1359–1370.

31. Cai Z, Zheng F, Ding Y, et al. Nrf2 – regulated miR-380-3p blocks the translation of Sp3 protein and its mediation of paraquat – induced toxicity in mouse neuroblastoma N2a cells. Toxicol. Sci. 2019;171(2):515–529.

32. Cocheme HM, Murphy MP. Complex is the major site of mitochondrial superoxide production by paraquat. J Biol Chem. 2008;283:1786–89.

33. Costantini P, Petronilli V, Colonna R, Bernardi P. On the effects of paraquat on isolated mitochondria. Evidence that paraquat causes opening of the cyclosporin A-sensitive permeability transition pore synergistically with nitric oxide. Toxicology. 1995;99:77–88.

34. Tawara T, Fukushima T, Hojo N, Isobe A, Shiwaku K, Setogawa T, et al. Effects of paraquat on mitochondrial electron transport system and catecholamine contents in rat brain. Arch Toxicol 1996;70:585–9.

35. Bus JS, Aust SD, Gibson JE. Paraquat toxicity: proposed mechanism of action involving lipid peroxidation. Environ Health Perspect. 1976;16:139–46.

36. Yamada K, Fukushima T. Mechanism of cytotoxicity of paraquat. II. Organ specificity of paraquat-stimulated lipid peroxidation in the inner membrane of mitochondria. Exp Toxicol Pathol 1993;45:375–80.

37. Kurisaki E. Lipid peroxidation in human paraquat poisoning. J Toxicol Sci. 1985;10:29–33.

38. Sun Y, Zheng J, Xu Y, Zhang X. Paraquat-induce dinflammatory response of microglia through HSP60/TLR4 signaling. Hum. and Exp. Toxicol. 2018;37(11):1161–1168.

39. Xu G, Wang X, Yu H, Wang C, et al. Beclin 1, LC3 and p62 expression in paraquat-induced pulmonary fibrosis. Hum. and Exp. Toxicol. 2019;38(7):794–802.

40. Rasooli R, Pourgholamhosein F, Kamali Y. Combination Therapy With Pirfenidone plus Prednizolone Ameliorates Paraquat-Induced Pulmonary Fibrosis. Inflammation 2018;41(1):134–142.

41. Pourgholamhossein F, Rasooli R, Pournamdari M, et al. Pirfenidone protects against Paraquat-Induced lung injury and fibrosis in mice by modulation of Inflammation, oxidative stress, and gene expression. Food and Chem. Toxicol. 2018;112:39–46.

42. Fowler BA, Brooks RE. Effects of the herbicide paraquat on the ultrastructure of mouse kidney. Am J Pathol 1971;63:505–20.

43. Roberts DM, Wilks MF, Roberts MS, Swaminathan R, Mohamed F, Dawson AH, et al. Changes in the concentrations of creatinine, cystatin C and NGAL in patients with acute paraquat self-poisoning. Toxicol Lett 2011;202:69–74.

44. Matsumori H, Matsumoto T, Ishikawa H. Acute toxic effects of paraquat on ultrastructure of rat liver. Acta Pathol Jpn. 1984;34:507–18.

45. Gao x, Wang WZ, Xiao Qm, Qix N, et al. Correlation between neutrophil gelatinaseassociated lipocalin and soluble CD14 subtype on the prognosis evaluation of acute paraquat poisoning patients. Hum. and Exp. Toxicol. 2020;39(4):402–10.

46. Gao Y, Guo S, Wang Y, Yu S, et al. Lymphocyte and its CD4+ and CD8+ subgroup changes after paraquat poisoning. Hum. and Exp. Toxicol. 2019;38(9):1024–1030.

47. Li H, Zhu Q, Wang S, et al. Paraquat exposure delays stem progenitor leydig cell regeneration in the adult rat testis. Chemosphere 2019;231:60–71.

48. Moyano P, Sanjuan J, Garcia J, et al. Primary hippocampal estrogenic dysfunction induces synaptic proteins alteration and neuronal cell death after single and repeated paraquat exposure. Food and Chem. Toxicol. 2020;136:110–111.

49. Eddleston M, Phillips MR. Self poisoning with pesticides. BMG. 2020;328:42–4.

 

Received 04/26/2021

Похожие материалы (по тегу)