Державне підприємство «Науковий центр превентивної токсикології, харчової та хімічної безпеки імені академіка Л.І. Медведя Міністерства охорони здоров’я України», м. Київ, Україна
РЕЗЮМЕ. Мета роботи. Провести аналіз та узагальнити дані сучасної літератури щодо залучення кролів для лабораторних експериментальних досліджень та обґрунтувати перспектив їхнього подальшого використання.
Матеріали та методи. У роботі застосовані аналітичні методи: збір наукової інформації за проблемою, аналіз літературних даних бібліотек PubMed та наукове узагальнення одержаних результатів.
Результати та висновки. Обґрунтовано принципи щодо перспектив подальшого використання кролів для проведення лабораторних експериментальних досліджень. Завдяки певним досягненням науки вже розроблено та впроваджено етичні альтернативні наукові методи тестування без залучення живих істот. Саме вони і допомагають отримати більш достовірні результати. Якщо в деяких наукових дослідженнях кролів вже не використовують, то щодо інших напрямків – навпаки з кожним роком зростає необхідність залучення цих ссавців для експериментів. І цьому є аргументоване пояснення. На даний час немає альтернативи використання кролів для виробництва антитіл, рекомбінантних білків. Тестування на лабораторних тваринах – кращий метод виявлення таких явищ, як рак і вроджені дефекти. Генетично модифіковані кролі – це нова перспектива для наукового пошуку. З розвитком нових технологій редагування геному, особливо CRISPR/Cas9 та його модифікацій, постала можливість з високою ефективністю одержувати набагато більшу кількість трансгенних тварин з точно заданими генетичними модифікаціями для розв’язання найрізноманітніших задач. Використання тварин в експериментах є критично важливим для деяких напрямків наукових досліджень, адже складність будови організму не може бути продубльована в культурі клітин або за допомогою комп’ютерних моделей.
Ключові слова: кролі, утримання, тестування на тваринах, здоров’я людини.
REFERENCES
1. Bellón JM, Rodríguez M, Pérez‐Köhler B, Pérez‐López P, Pascual G. The New Zealand White Rabbit as a model for preclinical studies addressing tissue repair at the level of the abdominal wall. Tissue Eng Part C Methods. 2017;23:863–80.
2. Bosze ZS, Houdebine LM. Application of rabbits in biomedical research: a review. World Rabbit Sci. 2006;14:1–14.
3. Draize JH, Woodard G, Calvery HO. Methods for the study of irritation and toxicity of substances applied topically to the skin and mucous membranes. J. Pharmacol Exp Ther. 1944;82:377–90.
4. Daniel Morton. The Use of Rabbits in Male Reproductive Toxicology. Environmental Health Perspectives. 1988;77:5–9.
5. Duverger N, Kruth H, Emmanuel F, Caillaud JM, Viglietta C, Castro G, et al. Inhibition of atherosclerosis development in cholesterol-fed human apolipoprotein A-1 transgenic rabbits. Circulation. 1996;94:713–17.
6. Fisher PG. Standards of care in the 21st century: the rabbit. J Exot Pet Med. 2010;19:22–35.
7. Franco NH. Animal experiments in biomedical research: a historical perspective. Animals. 2013;3:238–73.
8. Harkness JE, Wagner JE. The biology and medicine of rabbits and rodents (2nd Ed.). Lea & Febiger. 1983.
9. Dzherelo dostupu: тhttps://www.toxicology.org/pubs/docs/air/AIR_Final.pdf
10. Hui JH, Chan SW, Li J, et al. Intra‐articular delivery of chondroitin sulfate for the treatment of joint defects in rabbit model. J Mol Histol. 2007;38:483–489.
11. Hunt CE, Harrington DD, Weisbroth SH, Flatt RE, Kraus AL. Nutrition and nutritional diseases of the rabbit. In: The Biology of the Laboratory Rabbit. New York Academic Press: NY;1974,403–33.
12. Dzherelo dostupu: ISO 10993 – 10: 2002.
13. Kondo M, Sakai T, Komeima K, Kurimoto Y, Ueno S, Nishizawa Y, et al. Generation of a transgenic rabbit model of retinal degeneration. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2009;50:1371–7. doi: 10.1167/iovs.08-2863
14. Llebenberg SP, Linn JM. Seasonal and sexual influences on rabbit atropinesterase. Lab Anim. 1980;14:297–300.
15. Lv Q, Yuan L, Deng J, Chen M, Wang Y, Zeng J, et al. Efficient generation of myostatin gene mutated rabbit by CRISPR/Cas9. Sci. Rep. 2016;6:25029. doi:10.1038/srep25029.
16. Oki Y, Doi K, Makihara Y, Kobatake R, Kubo T, Tsuga K. Effects of continual intermittent administration of parathyroid hormone on implant stability in the presence of osteoporosis: an in vivo study using resonance frequency analysis in a rabbit model. J Appl Oral Sci. 2017;25:498–505.
17. Pasteur L. Méthode pour prévenir la rage après morsure. C. R. T. 1885;101:765–72.
18. Refinements in rabbit husbandry. SECOND REPORT OF THE BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW JOINT WORKING GROUP ON REFINEMENT. Laboratory Animals 1993;27:301–29.
19. Sayers I. Approach to preventive health care and welfare in rabbits. In Pract. 2010;32:190–8.
20. Sharpe R. The Draize test-motivations for change. Fd Chem Toxicol 1985;23:139–43.
21. Suckow Mark A, Brammer David W, Rush Howard G, Chrisp Clarence E. "Biology and Diseases of Rabbits." Chapter 9 in Laboratory Animal Medicine, 2nd Edition. James G. Fox, et al, editors. New-York: Academic Press; 2002.
22. Sui T, Xu L, Lau YS, Liu D, Liu T, Gao Y, et al. Development of muscular dystrophy in a CRISPR-engineered mutant rabbit model with frame-disrupting ANO5 mutations. Cell Death Dis. 2018;9:609.
23. Wang Y, Niimi M, Nishijima K, Waqar AB, Yu Y, Koike T, et al. Human apolipoprotein A-II protects against dietinduced atherosclerosis in transgenic rabbits. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2013;33:224–31. doi: 10.1161/ATVBAHA. 112.300445
24. Weber J, Peng H, Rader C. From rabbit antibody repertoires to rabbit monoclonal antibodies. Exp. Mol. Med. 2017;49:305. doi: 10.1038/emm.2017.23.
25. Yanni AE. The laboratory rabbit: an animal model of atherosclerosis research. Lab Anim. 2004;38:246–56.
Received 03/17/2021